domingo, 4 de junio de 2017


PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO     23/04/2017

En la actualidad, la mayoría de los medios de cultivo se comercializan ya
preparados y esterilizados.
Sin embargo, existe la posibilidad de comprarlos liofilizados. En estos casos la
preparación del medio de cultivo se reduce sencillamente a pesar la cantidad
deseada del mismo y disolverla en agua destilada siguiendo las instrucciones del
fabricante. Posteriormente se esterilizan, generalmente por calor húmedo en el
autoclave, excepto aquellos que contengan componentes termolábiles, que se
esterilizan por filtración.

Según el recipiente en que se vaya a distribuir, se seguirá el siguiente orden:
 En tubo: se reparten en los tubos antes de ser esterilizados. Se reparten
2-4 ml en caso de medios líquidos y unos 6-8 ml cuando sean tubos de
agar inclinado. En este último caso, tras la esterilización, se dejarán
apoyados en una superficie inclinada hasta que solidifiquen en forma de
slant o punta de flauta.

Resultado de imagen de medio de cultivo TUBO


 En placa de Petri: se esterilizan en botella o matraz Erlenmeyer. Una vez
esterilizados, se deja enfriar sin que llegue a solidificar para
posteriormente repartirlos en las placas en condiciones de esterilidad. Se
almacenarán en posición invertida.

Resultado de imagen de medio de cultivo PLACA



Objetivos:

 Preparar medios de cultivo como soporte y fuente de nutrientes para el desarrollo de los microorganismos


Fundamento

El medio de cultivo constituye el aporte de nutrientes indispensables para el crecimiento de los microorganismos. La composición precisa dependerá de la especie que se quiera cultivar, porque las necesidades nutricionales varían considerablemente.  Hay microorganismos muy poco exigentes que crecen bien en medios de laboratorio normales  y microorganismos muy exigentes que necesitan determinadas sustancias como vitaminas, suero o sangre para crecer.
Durante las prácticas se van a manejar medios de cultivo de composición muy variada y de tres tipos diferentes en cuanto a consistencia:
Medios sólidos: Se pueden preparar a partir de medios líquidos a los cuales se les añaden agentes solidificantes como agar, gelatina o sílica gel. Se utilizan con frecuencia en el aislamiento y mantenimiento de los microorganismos en el laboratorio. Ej. Agar nutritivo.
Semisólidos
Líquidos: Usualmente se denominan caldos ya que contienen los nutrientes disueltos en agua. Permiten obtener suspensiones con un elevado número de microorganismos. Ej. Caldo nutritivo
Este último aspecto es importante a la hora de la preparación de los mismos. Aunque los medios artificiales o sintéticos se pueden preparar a partir de sus componentes individuales, se pueden adquirir comercialmente como medios deshidratados a los que solamente hay que añadir la cantidad de agua necesaria. El fabricante indica la composición, la caducidad,  y la cantidad que debe pesarse por cada litro a preparar e incluso como debe esterilizarse.
La preparación de medios de cultivo a groso modo consistiría en: Se siguen las instrucciones del rótulo del medio de acuerdo a la cantidad a preparar. Se transfiere el medio a u Erlenmeyer y se agrega la cantidad de agua destilada establecida. Con ayuda de un vigilante se disuelven los grumos que puedan formarse y se lleva la suspensión a baño maría hasta que el medio se torne transparente, se cubre el Erlenmeyer con un tapón de algodón (torunda) envuelto en gasa. Se cubre la torunda con material impermeable y se esteriliza en autoclave a 121ºC durante 15 minutos. Si se utiliza de inmediato, dejar enfriar a temperatura alrededor de 45ºC. En caso de que el medio solidifique, fundirlo nuevamente a baño maría antes de su uso.
En el caso del caldo Mc Conkey, se siguen las instrucciones del rotulo, y se distribuye el caldo colocando 10 ml en tubos de ensayo de 20 y 10 ml en tubos de ensayo de 50. Se coloca previamente en los tubos una campana de Durham invertida. Se tapan los tubos y se esterilizan en autoclave durante 15 minutos a 121ºC.


TÉCNICA Y PROCEDIMIENTO:

- Limpiar superficie, antes y después, con agua y lejía.
- Cálculo y peso de agar.
- Medir agua en probeta.
- Mezclar en el Erlenmeyer (microondas).
- Autoclave.




1º Realizar los cálculos necesarios para conocer la cantidad de AGAR que hay que pesar



K.I.A:
1000ml ________54,5g

70ml __________  x



2º Colocaremos el papel, para evitar manchar la superficie sobre la que vamos a trabajar

3º Colocaremos todos los materiales a utilizar sobre dicho papel

4º Mediremos el agua destilada que vamos a necesitar para la realización de medio, para esto y en este caso utilizaremos una Probeta

5º Nos dirigimos hacia el peso, asegurándonos de que este éste encendido y limpio, colocaremos un vidrio de reloj sobre el peso, a continuación pulsaremos el botón “Tarar”, a partir de aquí ya podremos proceder a verter lentamente con ayuda de una espátula el AGAR  que necesitamos sobre el vidrio de reloj, hasta conseguir la cantidad necesaria, una vez obtenida dicha cantidad  los restos que se encuentren en la espátula no podremos volver a verterlos sobre el bote de soluto, lo verteremos sobre un vaso de precipitado, que usaremos para los restos. Recordad cerrar bien el bote de AGAR para evitar que este se derrame y/o contamine.

6º A continuación nos volvemos a dirigir a la mesa de trabajo que dejamos preparada anteriormente, con ayuda de la misma espátula usada con anterioridad verteremos el AGAR pesado en un matraz Erlenmeyer que previamente le habremos añadido un poco del agua que teníamos preparada en la Probeta

7º Una vez que hemos añadido todo el AGAR sobre el Matraz Erlenmeyer terminaremos de añadir el agua destilada de la Probeta.

8º Ya tenemos la preparación del AGAR casi terminada, a continuación después de haber mezclado el AGAR (gelificánte)  lo moveremos con una varilla agitadora para eliminar los grumos.

9º Una vez que podemos dar la mezcla por terminada tendremos que calentarla hasta su ebullición, esto se realizara en un microondas (tener cuidado ya que esto tarda muy pocos segundos)

10º Sacamos el medio del microondas, y lo añadimos en uno de estos materiales según la finalidad del medio, en caso de que su estado sea liquido o semisólido en tubo tendremos que añadir el medio con ayuda de un pipeta graduada con su pimpum correspondiente en tubos de ensayos (colocados en gradillas metálicas) que posteriormente esterilizaremos en autoclave y tras su esterilización lo colocaremos en tubo s de ensayo de tal forma que al enfriarse se nos quede con la forma que necesitamos para la realización de la prueba a la que está destinada ese tipo de AGAR.  En otros casos en los que el estado final del medio sea semisólido/solido tendremos que colocar el medio en una placa Petri, que solo tendremos que dejar enfriar.

11º En todos estos casos es importante rotular el material, ya sea el tubo de ensayo como la placa Petri, para así conocer el medio de cultivo y que no podamos confundirnos a la hora de realizar el cultivo.


Aparatos y materiales:

- AGAR (polvo)
- Agua destilada
- Placa Petri o tubos de ensayo
- Gradilla metálica para los tubos de ensayo
- Vidrio de reloj
- Probeta
- Matraz Erlenmeyer



sábado, 25 de marzo de 2017

RESULTADOS

Resultados



Turbidez Residuo Seco Acidez Alcalinidad Carbonatos
Mineral
0,31 gramos 13 mg/L CaCO3 15,3 mg/L CaCO3 96 mg/L Carbonatos
Grifo 3.05 NTU 0,4 gramos 10,8 mg/L CaCO3 23,8 mg/L CaCO3 18 mg/L Carbonatos




Bicarbonatos Oxidabilidad Cloruros Dureza TOTAL Dureza CALCICA
1,1 mg/L Bicarbonatos 3,8 mgO2/L 94,08 mgNaCl/L H2O 11,6 mg/L CaCO3 1,2 mg/LCaCO3
3,3 mg/L Bicarbonatos 3,1 mgO2/L 88,2 mgNaCl/LH2O 12mg/L CaCO3 11,1 mg/LCaCO3



PRÁCTICA 9

9- DETERMINACIÓN DE SULFATOS 21/02/2017



La muestra es tratada con cloruro de bario, en medio ácido, formándose un precipitado blanco de sulfato de bario, se requiere de un solvente acondicionador, que contiene glicerina y alcohol, para modificar la viscosidad de la muestra y así permitir que el precipitado de BaSO4 se mantenga en suspensión, produciendo valores de turbidez estables.
La turbidez de este precipitado se mide en un espectrofotometro a una longitud de onda de 425 nm y con una celda de 1 cm.

Na+ ] Na+ ]
K+ ] H+ K+ ]
Ca++ ] SO4= + BaCl2.H20 --------> BaSO4 + Ca++ ] Cl-
Mg++ ] Mg++ ]




Aparato
Cualquier espectrofotómetro que se pueda operar a una longitud de onda de 425 nanometros, con celdas de de 1 cm









Protocolo:
- Encender el espectrofotómetro
- MODE A (primera flecha) (modo absorbancia)
- GO TO WL (elección longitud de onda)
- Calibrar y pulsar AUTOZERO




Curva de calibración de sulfatos
Preparar una curva de calibración con los siguientes puntos: 0, 5, 10, 15, 20 y 25  ppm de SO4=
Se colocan en 6 matraces volumétricos de 100 ml  los siguientes volúmenes de solución estándar de 100 ppm de SO4= :  0, 5, 10, 15, 20 y 25 ml, se afora con agua destilada hasta la marca.
Continúe los pasos marcados en el procedimiento, para  desarrollar la turbidez. 














práctica 8

8 – DETERMINACIÓN DUREZA 14/02/2017

objetivos:
Determinar por titulometría con EDTA, las durezas total, de calcio y/o de magnesio, y la concentración de calcio y/o magnesio en una muestra de agua.

Fundamento:
En la práctica se define la dureza total del agua como la suma de las concentraciones de iones calcio y magnesio expresado como carbonato de calcio en mg/L. El método titulométrico se basa en la capacidad que tiene la sal sódica del ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) para formar complejos de quelato solubles al añadirse a soluciones de algunos cationes metálicos. Al determinar la Dureza Total, el pH de la solución debe estar alrededor de 10, para lo cual se adiciona la solución tampón de dureza y como indicador el Negro de Eriocromo T, que causa una coloración rojo vino. La adición de EDTA como titulante acompleja los iones calcio y magnesio y en el punto final de la titulación, la solución vira a color azul. Para asegurar un satisfactorio punto final, tiene que existir Mg, el cual se introduce en el tampón. Aunque la agudeza del punto final se incrementa con el pH, éste no puede incrementarse indefinidamente pues precipitaría carbonato de calcio o hidróxido de magnesio. Para la Dureza de Calcio se utiliza como alcalinizante el hidróxido de sodio para llevar el pH a un alto nivel con el fin de precipitar el magnesio y poder determinar el calcio, utilizando Murexida como indicador, que forma con el EDTA un punto final de color violeta definido. La Dureza de Magnesio se determina por diferencia entre la Dureza Total y la de Calcio. El Calcio y el Magnesio se determinan por cálculos provenientes de las Durezas de Calcio y Magnesio, respectivamente
Dureza total = (2,497xDureza Cálcica) + (4,118xDureza Magnésica)
Clasificación:
0-75 mgL/ CaCO3 Blanda
75-150 mgL/ CaCO3 Poco dura
150-300 mgL/ CaCO3 Dura *Limite potable
>300 mgL/ CaCO3 Muy dura


Dureza TOTAL

Reactivos:
Valorante: EDTA 0,01M (quelante del calcio)
Indicador: Negro de eriocromo T (punta cuchara)
Muestra: 100mL agua + 5mL tampón pH10
Procedimiento
1- Con una probeta se miden 100mL de la muestra de agua a analizar y se vierten un vaso de precipitado de 250mL
2- Se añaden 5mL de tampón pH10 y una pizca de Negro de Eirocromo (hasta que coja color)
3- Se valora con EDTA 0,01M (QUELANTE DEL CALCIO) colocada en una bureta, hasta que vire del color morado hasta verde, azul, gris

Dureza CALCICA

Reactivos:
Valorante: AgNO3 0,05N
Indicador: Murexida (punta cuchara)
Muestra: 100mL agua + 3mL NaOH 4N


Procedimiento
1- Con una probeta se miden 100mL de agua muestra y se deposita en un vaso de precipitado de 250mL
2- Se añaden una pizca de Murexida y 3 mL de NaOH 4N
3- Se valora con solución AgNO3 0,05N









material:
- vasos de precipitados
- pipetas y prepipetas
- papel de filtro
- bureta
- probeta
- pipeta pasteaur
- embudo
- rotulador permanente
- matraz erlenmeyer




interpretación de resultados:

dureza total= (2,497 x dureza cálcica) + (4,118 x dureza magnésica)

- agua mineral:
dureza total: 11,6 mg/l CaCO3
dureza cálcica: 12 mg/l CaCO3
- agua del grifo:
dureza total: 12 mg/l CaCO3

dureza cálcica: 11,1 mg/l CaCO3

práctica 7

7- DETERMINACIÓN DE CARBONATOS Y BICARBONATOS 07/02/2017

Objetivo:
determinar la cantidad de carbonatos y bicarbonatos presentes en una muestras

Fundamento:

La alcalinidad en el agua tanto natural como tratada, usualmente es causada por la presencia de iones carbonatos ( CO3= ) y bicarbonatos ( HCO3- ), asociados con los cationes Na+, K+ Ca+2 y Mg+2 .
La alcalinidad se determina por titulación de la muestra con una solución valorada de un ácido fuerte como el HCl, mediante dos puntos sucesivos de equivalencia, indicados ya sea por medios potenciométricos o por medio del cambio de color utilizando dos indicadores ácido-base adecuados.
Este método, es aplicable para la determinación de la alcalinidad de carbonatos y bicarbonatos, en aguas naturales, domésticas , industriales y residuales.
La medición de la alcalinidad, sirve para fijar los parámetros del tratamiento químico del agua, así como ayudarnos al control de la corrosión y la incrustación en los sistemas que utilizan agua como materia prima o en su proceso.

En este método, la alcalinidad se determina por titulación de la muestra con una solución valorada de un ácido fuerte como el HCl, mediante dos puntos sucesivos de equivalencia, indicados por medio del cambio de color de dos indicadores ácido-base adecuados.

CO3-HCO3 y HCO3-H2CO3

Cuando se le agrega a la muestra de agua indicador de fenolftaleína y aparece un color rosa, esto indica que la muestra tiene un pH mayor que 8.3 y es indicativo de la presencia de carbonatos.
Se procede a titular con HCl valorado, hasta que el color rosa vire a incoloro, con esto, se titula la mitad del CO3=.
En enseguida se agregan unas gotas de indicador de anaranjado de metilo, apareciendo una coloración naranja y se continua titulando con HCl hasta la aparición de una coloración naranja teja. Con esto, se titula los bicarbonatos (HCO3-) y la mitad restante del CO3

Reactivos:
- valorante: Hcl 0,1N
- indicador: fenolftaleína para carbonatos y anaranjado de metilo para bicarbonatos

Material:
- vasos de precipitados
- pipetas y prepipetas
- papel de filtro
- bureta
- probeta
- pipeta pasteaur
- embudo
- rotulador permanente
- matraz erlenmeyer


procedimiento:
 1- cogemos la muestra de 100ml de agua y le añadimos de 5 a 8 gotas de fenolftaleína (rosa)
2- echamos el valorante (Hcl) a la bureta y valoramos hasta que vire de rosa a transparente
3- anotamos el Hcl gastado y volvemios a enrasar la bureta con valorante
4- en el mismo vaso que ha virado a transparente se le echan de 3 a 5 gotas del indicador anaranjado de metilo( amarillo)
5- volvemos a valorar con Hcl hasta que vire a transparente


interpretación de resultados:
CARBONATOS
V (HCl gastado en primera valoración)x 60= mg/L Carbonatos

BICARBONATOS
V (HCl gastado en segunda valoración)x 61= mg/L Bicarbonatos
agua mineral:96 mg/l carbonatos
agua del grifo: 18 mg/l carbonatos
agua mineral: 1,1 mg/l bicarbonatos
agua del grifo: 3,3 mg/l bicarbonatos

práctica 5

5. DETERMINACIÓN DE CLORUROS                                                                      24/01/2017

Objetivo:
Se busca determinar la concentración de iones cloruros de una muestra de agua.

Fundamento:
El ion cloruro es uno de los principales aniones de las aguas, incluidas las aguas negras. En concentraciones altas, el cloruro puede impartir al agua un sabor salino.  Existen varios métodos para su determinación y de ellos, el argentométrico es aconsejado para aguas relativamente claras con concentraciones de Cl- de 5 mg/L o mayores y donde 0.15 a 10 mg del anión estén presentes en la porción valorada. En una solución neutra o ligeramente alcalina, el cromato de potasio puede indicar el punto final de la valoración de cloruros con nitrato de plata. Se produce la precipitación cuantitativa de cloruro de plata y posteriormente, la de cromato de plata de color rojo ladrillo

Reactivos:
Valorante: AgNO3 0,1M
Indicador: K2CrO4 10% m/v
Muestra: 100mL + CaCO3

Material:
- vasos de precipitados
- pipetas y prepipetas
- papel de filtro
- bureta
- probeta
- pipeta pasteaur
- embudo
- rotulador permanente
- matraz erlenmeyer

Procedimiento:
1- preparo una muestra de 100ml de agua y le añado 3 gotas de HNO3 y una punta de cuchara de carbonato cálcico (CaCO3) para tamponar el medio
2- preparo el indicador K2CrO4 al 10% m/v y le añado 3 gotas de este a la muestras
3- valoro con nitrato de plata (AgNO3) hasta que vire de color amarillo vivo a naranja teja





Interpretación de resultados:
Volumen x 10 x 3,55 = mg Cl-/L H2O
Volumen x 10 x 5,88 = mg NaCl/L H2O
agua mineral: 94,08 mg NaCl /l H2O

agua del grifo: 88,2 mg NaCL /l H2O

práctica 6

6. DETERMINACIÓN OXIDABILIDAD 31/01/2017

Objetivo:
Es un indicador de la materia orgánica e inorgánica oxidable presente en el agua. Se determina mediante la oxidación química de la materia orgánica y de las sustancias oxidables, con permanganato potásico que actúa como oxidante.


Fundamento:
La oxidación química de las materias orgánicas y de las substancias oxidables se puede efectuar con el permanganato de potasio en caliente o en frío. Según la acidez del medio y la temperatura. La oxidación es más o menos enérgica. Este test convencional permite apreciar el contenido de materia orgánica al mismo tiempo que la presencia de otras sustancias reductoras.
Se denomina índice de oxidabilidad de un agua al equivalente en oxigeno del permanganato de potasio consumido cuando se calienta éste en un baño maría durante 30 minutos con el agregado de una cantidad determinada de permanganato de potasio, en medio sulfúrico.
La oxidabilidad es una medida aproximada de la cantidad de materia orgánica existente en el agua, si el agua contiene nitritos, sulfuros, ión ferroso o cualquier otra sustancia mineral reductora del permanganato, se debe efectuar una corrección.
Sin embargo existe la desventaja de que ciertas sustancias tales como aminoácidos, cetonas o ácidos carboxílicos no son oxidados
Para obtener resultados comparables es imprescindible seguir en forma rigurosa la técnica analítica empleando siempre las mismas cantidades de reactivos y efectuando el calentamiento en idénticas condiciones.
La solución de KMnO4 empleada es 0,0125 N, esto tiene por finalidad facilitar los cálculos por cuanto como es fácil demostrar, 1 mL de la misma equivale a 0.1 mg de O2.
En esencia es una determinación por retorno, el permanganato de potasio, que no reaccionó con la materia orgánica, se reduce por el agregado de un volumen conocido de ácido oxálico de la misma normalidad del permanganato y el exceso de aquel se titula con KMnO4 0.0125 N.
Esta titulación se debe realizar a una temperatura de 60-80 °C.

Reactivos:
Valorante: KMnO4
Indicador: Sal de Morh (sulfato hierro III y amonio hexahidratado)
Muestra: 100mL agua

Material:
- vasos de precipitados
- pipetas y prepipetas
- papel de filtro
- bureta
- placa calefactora
- guantes aislantes de calor
- probeta
- pipeta pasteaur
- embudo
- rotulador permanente
- matraz erlenmeyer

Procedimiento
1- A 100mL de agua le añadimos 2,5 mL de H2SO4 (1:3) y 3 perlitas de vidrio, esto lo llevamos a ebullición aguantando de 2 a 3 minutos para liberar el CO2
2- Añadimos 10mL KMnO4 (0,0125M), mantenemos en ebullición 10’ y enfriamos. Decoloramos con Sal de Mohr
3- Valoramos con KMnO4 hasta que aparezca color rosa






interpretación de resultados
agua mineral: 3,8 mg O2/l

agua del grifo: 3,1 mg O2/l